Phytoplasma

Gattung der Familie Acholeplasmataceae

Phytoplasmen sind zellwandfreie Bakterien, die als obligate Parasiten im pflanzlichen Phloem wachsen.

Phytoplasma
Systematik
Terrabacteria
Abteilung: Mycoplasmatota
Klasse: Mollicutes
Ordnung: Acholeplasmatales
Familie: Acholeplasmataceae
Gattung: Phytoplasma
Wissenschaftlicher Name
„Candidatus Phytoplasma
Firrao et al. 2004[1]
Von Phytoplasmen befallene Kokospalmen mit Blattvergilbungen

Phytoplasmen (offiziell „Candidatus Phytoplasma“) wurden 1967 entdeckt.[2] Seit 1994 werden sie einer eigenen Gattung (Candidatus “Phytoplasma”)[3] zugeordnet, zuvor wurden sie der Gattung Mycoplasma zugerechnet und als MLO (englisch Mycoplasma-like organism) bezeichnet.

Beschreibung

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Diese Vertreter der Klasse Mollicutes werden von phloemsaugenden Insekten wie Zikaden von Pflanze zu Pflanze übertragen; die Insekten wirken daher als Vektoren. Die Bakterien sind außerhalb von Pflanzen oder Insekten nicht überlebensfähig und daher nicht in vitro kultivierbar. Sie sind zumeist unter 1 µm groß und haben eine pleiomorphe oder filamentöse Form. Im Vergleich zu den Bacillus-/ Clostridium-Vorfahren ist ihr Genom als Anpassung auf eine parasitische Lebensweise stark reduziert; artabhängig liegt die Genomgröße zwischen 530 und 1350 kbp.[4] Es fehlen Gene, die für die Synthese von ATP, Proteinen und Nukleotiden notwendig sind. Dementsprechend sind Phytoplasmen auf den Import solcher Metabolite aus den Wirtszellen angewiesen.

Phytoplasmosen

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Zu den bekannten Wirtspflanzen zählen u. a. Nutzpflanzen wie Kokospalme, Kirsch- und Apfelbäume, Weinreben, Zuckerrohr und Reis. Der Pathogenbefall führt zu Blattvergilbungen, Nekrosen und Wuchsanomalien wie Zwergwuchs, Phyllodie (Bildung von blattähnlichen Strukturen an Stelle von Blüten) und Besenwuchs. Zusammenfassend werden diese Symptome als Phytoplasmose bezeichnet. Die Beeren von betroffenen Weinreben schrumpfen im reifen Zustand, werden sauer und können abfallen. Die Blattvergilbungen werden durch eine inhibierte Chlorophyll-Synthese und durch einen beeinträchtigten Assimilat-Transport in den Blättern ausgelöst. Phyllodie resultiert aus Einwirkungen der Phytoplasmen auf die Regulation von Blütengenen.[5]

Phytoplasmen-Befall kann mit PCR-Testverfahren überprüft werden. Phytoplasmosen verursachen einen erheblichen wirtschaftlichen Schaden, da sie auch viele Kulturpflanzen schädigen. Um Ernteeinbußen zu vermeiden, werden resistente Sorten angebaut und die Phytoplasmen übertragenden Insekten bekämpft.

Bedeutende Phytoplasmosen

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Die folgende Liste enthält landwirtschaftlich und gartenbaulich bedeutende Phytoplasmosen. Neben der englischen, international verwendeten Bezeichnung der Erkrankung sind jeweils auch der deutsche Name bzw. die Symptome der Erkrankung sowie die Wirtspflanze(n) angegeben. Falls vorhanden, ist die Gruppe, in die die jeweiligen Erreger eingeteilt wurden, aufgeführt. Angegeben ist außerdem der Code, unter dem die Erregerart in der GenBank geführt wird.

Internationaler Name Deutscher Name /Symptome Phytoplasma-Spezies Wirtspflanze(n) Gruppe/Untergruppe Genbank-Code Beleg
Nigerian awka disease Awka-Krankheit Ca. Phytoplasma cocosnigeriae“ Kokospalme (Cocos nucifera) 16SrXXII-A Y14175 [6]
Tanzanian lethal disease Verfall der Kokosnuss Ca. Phytoplasma cocostanzaniae“ Kokospalme (Cocos nucifera) unbestimmt X80117 [6]
Loofah witches' broom Hexenbesen der Luffagewächse Ca. Phytoplasma luffae“ Luffa-Arten 16SrVIII-A AF086621 [7]
Palm lethal yellowing Palmenvergilbung Ca. Phytoplasma palmae“ mind. 37 Palmenarten, darunter auch Kokos- und Dattelpalme 16SrIV-A U18747 [8]
Western X-disease Verfall der Traubenkirsche Ca. Phytoplasma“ Virginische Traubenkirsche, Prunus-Arten 16SrIII-A L04682 [9]
Stolbur phytoplasma Stolbur Ca. Phytoplasma solani Nachtschattengewächse, v. a. Tomaten und Kartoffeln 16SrXII-A AF248959 [10]
Flavescence doree Goldgelbe Vergilbung Ca. Phytoplasma vitis“ Weinreben (Vitis) 16SrV-C AF176319 [11]
Papaya yellow crinkle Kräuselkrankheit und Vergilbung der Papaya Ca. Phytoplasma aurantifolia“ Papaya (Carica papaya) 16SrII-D Y10097 [12]
Allocasuarina yellows Allocasuarina-Vergilbung Ca. Phytoplasma allocasuarinae“ Allocasuarina-Arten unbestimmt AY135523 [13]
Potato purple top wilt Spitzenwelke der Kartoffel Ca. Phytoplasma americanum“ Kartoffel 16SrXVIII DQ174122 [14]
Lime witches' broom Hexenbesen bei Limetten Ca. Phytoplasma aurantifolia“ Echte Limette (Citrus × aurantifolia) 16SrII-B U15442 [15]
Grapevine yellows Vergilbung an Reben Ca. Phytoplasma australiense“ Weinreben (Vitis) 16SrXII L76865 [16]
Balanites witches' broom Hexenbesen bei Datteln Ca. Phytoplasma balanitae“ Datteln (Balanites) 16SrV AB689678 [17]
Hibiscus witches' broom Hexenbesen beim Hibiskus Ca. Phytoplasma brasiliense“ Hibiskusarten (Hibiscus) 16SrXV AF147708 [18]
Papaya bunchy top Büschelgipfelkrankheit der Papaya Ca. Phytoplasma caricae“ Papaya (Carica papaya) 16SrXVII AY725234 [12]
Chestnut witches' broom Hexenbesen bei Kastanien Ca. Phytoplasma castaneae“ Kastanien (Castanea) 16SrXIX AB054986 [19]
Bindweed yellows Vergilbung an Winden Ca. Phytoplasma convolvuli“ Windengewächse (Convolvulaceae) 16SrXII JN833705 [20]
Soybean stunt Sojabohnen-Stauche Ca. Phytoplasma costaricanum“ Sojabohne (Glycine max) 16SXXXI HQ225630 [21]
Sugarcane white leaf Weißblättrigkeit beim Zuckerrohr Ca. Phytoplasma cynodontis“ Zuckerrohr (Saccharum spp. und ihre Hybride) 16SrXI AB052874 [22]
Sugarcane white leaf Weißblättrigkeit beim Zuckerrohr Ca. Phytoplasma cynodontis“ Zuckerrohr (Saccharum spp. und ihre Hybride) 16SrXI-C X76432 [22]
Areca palm yellow leaf Gelbblättrigkeit der Goldfruchtpalme Ca. Phytoplasma cynodontis“ Goldfruchtpalme (Dypsis lutescens) 16SrXI-A JN967909 [23]
Bermuda grass white leaf Weißblättrigkeit beim Hundszahngras Ca. Phytoplasma cynodontis“ Hundszahngras (Cynodon dactylon) 16SrXIV AJ550985 [24]
Sorghum grassy shoot Grastriebigkeit der Sorghumhirse Ca. Phytoplasma cynodontis“ Sorghumhirsen (Sorghum) unbestimmt AF509324 [25]
Strawberry witches' broom Hexenbesen bei Erdbeeren Ca. Phytoplasma fragariae“ Erdbeeren (Fragaria) 16SrXII-E DQ086423 [26]
Ash yellows Vergilbung der Eschen Ca. Phytoplasma fraxini“ Eschen (Fraxinus) 16SrVII-A AF092209 [27]
Sugarcane Yellow Leaf Gelbblättrigkeit des Zuckerrohrs Ca. Phytoplasma graminis“ Zuckerrohr (Saccharum spp. und ihre Hybride) 16SrXVI AY725228 [22]
Hydrangea phyllody Phyllodie (Verlaubung) bei Hortensien Ca. Phytoplasma japonicum“ Hortensien (Hydrangea) 16SrXII-D AB010425 [28]
Parsley leaf of tomato Petersilienlaubigkeit der Tomate Ca. Phytoplasma lycopersici“ Tomate (Solanum lycopersicum) unbestimmt EF199549 [29]
Periwinkle phyllody Phyllodie (Verlaubung) beim Immergrün Ca. Phytoplasma malasianum“ Immergrün (Vinca) 16SrXXXII EU371934 [30]
Apple proliferation Apfeltriebsucht Ca. Phytoplasma mali“ Malus-Arten 16SrX-A AJ542541 [31]
Cassia italica witches’ broom Hexenbesen an Senna italica Ca. Phytoplasma omanense“ Senna italica 16SrXXIX EF666051 [32]
Rice yellow dwarf Vergilbung und Verzwergung beim Reis Ca. Phytoplasma oryzae“ Reis (Oryza) 16SrXI-A D12581 [33]
Rice yellow dwarf Vergilbung und Verzwergung beim Reis Ca. Phytoplasma oryzae“ Reis (Oryza) 16SrXI-A AB052873 [33]
Almond lethal disease Mandelsterben Ca. Phytoplasma phoenicium“ Mandelbaum (Prunus dulcis) 16SrIX-D AF515636 [34]
Pine shoot proliferation Kieferntriebsucht Ca. Phytoplasma pini“ Kiefern (Pinus) 16SrXXI AJ632155 [35]
Prunus X-disease Prunus-X-Krankheit Ca. Phytoplasma pruni“ Prunus-Arten 16SrIII-A JQ044393 [36]
European stone fruit yellows Vergilbung der Steinfrüchte Ca. Phytoplasma prunorum“ Prunus-Arten 16SrX-F AJ542544 [37]
Pear decline Birnenverfall Ca. Phytoplasma pyri“ Birnen (Pyrus) 16SrX-C AJ542543 [38]
Buckthorn witches' broom Hexenbesen beim Kreuzdorn Ca. Phytoplasma rhamni“ Kreuzdorne (Rhamnus) 16SrXX X76431 [39]
Rubus stunt Rubus-Stauche Ca. Phytoplasma rubi“ Rubus-Arten 16SrV AY197648 [40]
Bois noir Schwarzholzkrankheit Ca. Phytoplasma solani“ Reben (Vitis) 16SrXII JQ730746 [41]
Spartium witches' broom Hexenbesen beim Ginster Ca. Phytoplasma spartii“ Ginster (Spartium) 16SrX-D X92869 [13]
Salt cedar witches' broom Hexenbesen an Tamarisken Ca. Phytoplasma tamaricis“ Tamarisken (Tamarix) 16SrXXX FJ432664 [42]
Clover proliferation Triebsucht beim Klee Ca. Phytoplasma trifolii“ Klee (Trifolium) 16SrVI-A AY390261 [43]
Elm yellows Vergilbung bei Ulmen Ca. Phytoplasma ulmi“ Ulmen (Ulmus) 16SrV-A AY197655 [44]
Jujube witches' broom Hexenbesen an Jujuben Ca. Phytoplasma ziziphi“ Chinesische Jujube (Ziziphus zizyphus) 16SrV-B AB052876 [45]
Aster yellows Vergilbung der Astern Ca. Phytoplasma asteris“ Astern (Aster) 16SrI M30790 [46]
Mexican periwinkle virescence Vergrünung am mexikanischen Immergrün noch nicht nachgewiesen Immergrün (Vinca) 16SrXIII-A AF248960 [47]
Sorghum bunchy shoot Büschelgipfelkrankheit der Sorghumhirsen noch nicht nachgewiesen Sorghumhirsen (Sorghum) 16SrXXIV-A AF509322 [25]
Sugarcane yellows Zuckerrohrvergilbung noch nicht nachgewiesen Zuckerrohr (Saccharum spp. und ihre Hybride) 16SrXXVI-A AJ539179 [22]
Sugarcane yellows Zuckerrohrvergilbung noch nicht nachgewiesen Zuckerrohr (Saccharum spp. und ihre Hybride) 16SrXXVII-A AJ539180 [22]
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Einzelnachweise

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  1. LPSN: Genus "Candidatus Phytoplasma" Firrao et al. 2004.
  2. Y. Doi, M. Teranaka, K. Yora, H. Asuyama: Mycoplasma or PLT grouplike microorganisms found in phloem elements of plants infected with mulberry dwarf, potato witches' broom, aster yellows, or Paulownia witches' broom. In: Annals of the Phytopathological Society of Japan, Band 33, 1967, ISSN 0031-9473, S. 259–266; doi:10.3186/jjphytopath.33.259 (englisch).
  3. boku.ac.at
  4. C. Marcone, H. Neimark, A. Ragozzino, U. Lauer, E. Seemüller: Chromosome Sizes of Phytoplasmas Composing Major Phylogenetic Groups and Subgroups. In: Phytopathology. (APS Press) 89 (9), 1999, S. 805–810. doi:10.1094/PHYTO.1999.89.9.805.
  5. P. Pracros, J. Renaudin, S. Eveillard, A. Mouras, M. Hernould: Tomato Flower Abnormalities Induced by Stolbur Phytoplasma Infection Are Associated with Changes of Expression of Floral Development Genes. In: Molecular Plant Microbe Interactions. (APS Press) 19 (1), 2006, S. 62–68. doi:10.1094/MPMI-19-0062.
  6. a b A. M. Tymon, P. Jones, N. A. Harrison: Phylogenetic relationships of coconut phytoplasmas and the development of specific oligonucleotide PCR primers. In: Annals of Applied Biology. Band 132, Nr. 3, Juni 1998, S. 437–452; doi:10.1111/j.1744-7348.1998.tb05220.x, Epub 28. Juni 2008 (englisch).
  7. Helena Guglielmi Montano, Paulo Sergio Torres Brioso, Jadier J. O. Cunha, Daniel V. Figueiredo, João P. Pimentel: First report of group 16SrIII phytoplasma in loofah (Luffa cylindrica). In: Bulletin of Insectology, Band 60, Dezember 2007, S. 277–278; ResearchGate:237713722 (englisch).
  8. Nigel A. Harrison, Monica L. Elliott: Lethal Yellowing (LY) of Palm. auf der Homepage der University of Florida IFAS Extension, abgerufen am 27. März 2016.
  9. Western x-disease – a Spiroplasma. auf der Homepage Agriculture and Agri-Food des Government of Canada, abgerufen am 27. März 2016.
  10. Data Sheets on Quarantine Pests: Potato stolbur phytoplasma. (Memento des Originals vom 27. März 2016 im Internet Archive)  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.eppo.int der European and Mediterraneaen Plant Protection Organization (EPPO), abgerufen am 27. März 2016.
  11. Landwirtschaftliches Technologiezentrum Augustenberg: Grapevine flavescence dorée phytoplasma – GoldgelbeVergilbung an Wein. (Memento des Originals vom 27. März 2016 im Internet Archive)  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.ltz-bw.de, Hinweise zur Pflanzengesundheit - Quarantäne-Schadorganismen, abgerufen am 27. März 2016.
  12. a b K. S. Gibb, D. M. Persley, B. Schneider, J. E. Thomas: Phytoplasmas Associated with Papaya Diseases in Australia. In: Plant Disease. 80 (2), Januar 1996, S. 174.
  13. a b C. Marcone, K. S. Gibb, C. Streten, B. Schneider: Ca. Phytoplasma spartii“, „Ca. Phytoplasma rhamni“ and „Ca. Phytoplasma allocasuarinae“, respectively associated with spartium witches'-broom, buckthorn witches'-broom and allocasuarina yellows diseases. In: Int J Syst Evol Microbiol. 54 (Pt 4), 2004, S. 1025–1029.
  14. Data Sheets on Quarantine Pests: Potato purple-top wilt phytoplasma. (Memento des Originals vom 27. März 2016 im Internet Archive)  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.eppo.int der European and Mediterraneaen Plant Protection Organization (EPPO), abgerufen am 27. März 2016.
  15. Dilip Ghosh, Sumit Bhose, R. Manimekalai, S. Gowda: Molecular detection of Candidatus Phytoplasma spp. causing witches’ broom disease of acid lime (Citrus aurantifolia) in India. In: Journal of Plant Biochemistry and Biotechnology. Volume 22, Issue 3, Juli 2013, S. 343–347.
  16. R. E.Davis, E. L. Dally, D. E. Gundersen, I. M. Lee, N. Habili: „Candidatus phytoplasma australiense,“ a new phytoplasma taxon associated with Australian grapevine yellows. In: Int J Syst Bacteriol. 47 (2), 1997, S. 262–269.
  17. N. K. Win, S. Y. Lee, A. Bertaccini, S. Namba, H. Y. Jung:Ca. Phytoplasma balanitae“ associated with witches' broom disease of Balanites triflora. In: Int J Syst Evol Microbiol. 63 (Pt 2), Februar 2013, S. 636–640, doi:10.1099/ijs.0.041566-0
  18. H. G. Montano, R. E. Davis, E. L. Dally, S. Hogenhout, J. P. Pimentel, P. S. Brioso: Ca. Phytoplasma brasiliense“, a new phytoplasma taxon associated with hibiscus witches' broom disease. In: Int J Syst Evol Microbiol. 51, Mai 2001, S. 1109–1118.
  19. H. Y. Jung, T. Sawayanagi, S. Kakizawa, H. Nishigawa, S. Miyata, K. Oshima, M. Ugaki, J. T. Lee, T. Hibi, S. Namba: Ca. Phytoplasma castaneae“, a novel phytoplasma taxon associated with chestnut witches' broom disease. In: Int J Syst Evol Microbiol. 52 (Pt 5), September 2002, S. 1543–1549.
  20. M. Martini, C. Marcone, J. Mitrović, M. Maixner, D. Delić, A. Myrta, P. Ermacora, A. Bertaccini, B. Duduk: Ca. Phytoplasma convolvuli“, a new phytoplasma taxon associated with bindweed yellows in four European countries. In: Int J Syst Evol Microbiol. 62 (Pt 12), Dezember 2012, S. 2910–2915. doi:10.1099/ijs.0.038612-0
  21. I. M. Lee, K. D. Bottner-Parker, Y. Zhao, W. Villalobos, L. Moreira: Ca. Phytoplasma costaricanum“ a novel phytoplasma associated with an emerging disease in soybean (Glycine max). In: Int J Syst Evol Microbiol. 61 (Pt 12), Dezember 2011, S. 2822–2826; doi:10.1099/ijs.0.029041-0
  22. a b c d e C. Marcone: Phytoplasma Diseases of Sugarcane. In: Sugar Tech. Vol. 4 (3 & 4), 2002, S. 79–85.
  23. G. P. Rao, S. Mall, S. K. Raj, S. K. Snehi: Phytoplasma diseases affecting various plant species in India. In: Acta Phytopathologica et Entomologica Hungarica. Volume 46, Juni 2011, S. 59–99.
  24. C. Marcone, B. Schneider, E. Seemüller: Ca. Phytoplasma cynodontis“, the phytoplasma associated with Bermuda grass white leaf disease. In: E.Int J Syst Evol Microbiol. 54 (Pt 4), Juli 2004, S. 1077–1082.
  25. a b Y. Arocha Rosete, Phil Jones: Sorghum bushy shoot (SBS) and grassy shoot (SGS). In: Phyllis G. Weintraub, Phil Jones (Hrsg.): Phytoplasmas: Genomes, Plant Hosts and Vectors. CABI 2010, S. 177–178.
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  27. Jill D. Pokorny, Wayne A. Sinclair: How to Identify and Manage Ash Yellows in Forest Stands and Home Landscapes. United States Forest Service, Northern Area State & Private Forestry, 1994.
  28. T. Sawayanagi, N. Horikoshi, T. Kanehira, M. Shinohara, A. Bertaccini, M. T. Cousin, C. Hiruki, S. Namba: Ca. phytoplasma japonicum“, a new phytoplasma taxon associated with Japanese Hydrangea phyllody. In: Int J Syst Bacteriol. 49 (3), Juli 1999, S. 1275–1285.
  29. P. Jones, Y. Arocha, O. Antesana, E. Montellano, P. Franco: 'Hoja de perejil’ (parsley leaf) of tomato and morrenia little leaf, two new diseases associated with a phytoplasma in Bolivia. In: Plant Pathology. 54, Issue 2, April 2005, S. 235; doi:10.1111/j.1365-3059.2005.01132.x
  30. N. Nejat, G. Vadamalai, R. E. Davis, N.A. Harrison, K. Sijam, M. Dickinson, S. N. Abdullah, Y. Zhao: Ca. Phytoplasma malaysianum“, a novel taxon associated with virescence and phyllody of Madagascar periwinkle (Catharanthus roseus). In: Int J Syst Evol Microbiol. 63 (Pt 2), Februar 2013, S. 540–548; doi:10.1099/ijs.0.041467-0
  31. Data Sheets on Quarantine Pests: Apple proliferation phytoplasma. (Memento des Originals vom 27. März 2016 im Internet Archive)  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.eppo.int der European and Mediterraneaen Plant Protection Organization (EPPO), abgerufen am 27. März 2016.
  32. N. A. Al-Saady, A. J. Khan, A. Calari, A. M. Al-Subhi, A. Bertaccini: ‘Ca. Phytoplasma omanense’ associated with witches’-broom of Cassia italica (Mill.) Spreng. in Oman. In: Int J Syst Evol Microbiol. 58 (2), Februar 2008, S. 461–466; doi:10.1099/ijs.0.65425-0.
  33. a b Hee-Young Jung, Toshimi Sawayanagi, Porntip Wongkaew, Shigeyuki Kakizawa, Hisashi Nishigawa, Wei Wei, Kenro Oshima, Shin-ichi Miyata, Masashi Ugaki, Tadaaki Hibi, Shigetou Namba: „Ca. Phytoplasma oryzae“, a novel phytoplasma taxon associated with rice yellow dwarf disease. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 53, 2003, S. 1925–1929; doi:10.1099/ijs.0.02531-0
  34. E. Verdin, P. Salar, J. L. Danet, E. Choueiri, F. Jreijiri, S. El Zammar, B. Gélie, J. M. Bové, M. Garnier: Ca. phytoplasma phoenicium“ sp. nov., a novel phytoplasma associated with an emerging lethal disease of almond trees in Lebanon and Iran. In: Int J Syst Evol Microbiol. 53 (3), Mai 2003, S. 833–838.
  35. B. Schneider, E. Torres, M. P. Martín, M. Schröder, H. D. Behnke, E. Seemüller: Ca. Phytoplasma pini“, a novel taxon from Pinus silvestris and Pinus halepensis. In: Int J Syst Evol Microbiol. 55 (1), Januar 2005, S. 303–307.
  36. R. E. Davis, Y. Zhao, E. L. Dally, I. M. Lee, R. Jomantiene, S. M. Douglas:Ca. Phytoplasma pruni“, a novel taxon associated with X-disease of stone fruits, Prunus spp.: multilocus characterization based on 16S rRNA, secY, and ribosomal protein genes. In: Int J Syst Evol Microbiol. 63 (2), Februar 2013, S. 766–776; doi:10.1099/ijs.0.041202-0
  37. C. Marcone, B. Jarausch, W. Jarausch: Ca. Phytoplasma prunorum“, the causal agend of European Stone Fruit Yellows: an overview. In: Journal of Plant Pathology. 92 (1), 2010, S. 19–34.
  38. L. Giunchedi, C. Poggi Pollini, R. Bissani, A. R. Babini, V. Vicchi: Etiology of a pear decline disease in Italy and susceptibility of pear variety and rootstock to phytoplasma-associated pear decline. In: Acta Horticulturae. 386, 1995, S. 489–495.
  39. Jelena Jovic, Oliver Krstic, Ivo Tosevski, Andre Gassmann: The occurrence of ‘Candidatus phytoplasma rhamni’ in Rhamnus cathartica L. without symptoms. In: Bulletin of Insectology. 64 (Supplement), 2011, S. 227–228.
  40. Sylvie Malembic-Maher, Pascal Salar, Luisa Filippin, Patricia Carle, Elisa Angelini, Xavier Foissac: Genetic diversity of European phytoplasmas of the 16SrV taxonomic group and proposal of „Ca. Phytoplasma rubi“. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 61, 2011, S. 2129–2134.
  41. F. Quaglino, Y. Zhao, P. Casati, D. Bulgari, P. A. Bianco, W. Wei, R. E. Davis: Ca. Phytoplasma solani“, a novel taxon associated with stolbur- and bois noir-related diseases of plants. In: Int J Syst Evol Microbiol. 63 (Pt 8), August 2013, S. 2879–2894; doi:10.1099/ijs.0.044750-0
  42. Y. Zhao, Q. Sun, W. Wei, R. E. Davis, W. Wu, Q. Liu: Ca. Phytoplasma tamaricis“, a novel taxon discovered in witches'-broom-diseased salt cedar (Tamarix chinensis Lour.). In: Int J Syst Evol Microbiol. 59 (10), Oktober 2009, S. 2496–2504; doi:10.1099/ijs.0.010413-0
  43. C. Hiruki, K. Wang: Clover proliferation phytoplasma: „Ca. Phytoplasma trifolii“. In: Int J Syst Evol Microbiol. 54 (Pt 4), Juli 2004, S. 1349–1353.
  44. N. L. Arismendi, R. Riegel, R. Carrillo: In vivo transmission of „Ca. Phytoplasma ulmi“ by Amplicephalus curtulus (Hemiptera: Cicadellidae) and its effect on ryegrass (Lolium multiflorum cv. tama). In: J Econ Entomol. 107 (1), Februar 2014, S. 83–91.
  45. R.R. Wang, H.Q. Mou, X.X. Gao, L. Chen, M.F. Li, Q.C. Wang: Cryopreservation for eradication of Jujube witches' broom phytoplasma from Chinese jujube (Ziziphus jujuba). In: Annals of Applied Biology. 166 (2), März 2015, S. 218–228.
  46. I. M. Lee, D. E. Gundersen-Rindal, R. E. Davis, K. D. Bottner, C. Marcone, E. Seemüller:Ca. Phytoplasma asteris“, a novel phytoplasma taxon associated with aster yellows and related diseases. In: Int J Syst Evol Microbiol. 54 (Pt 4), Juli 2004, S. 1037–1048.
  47. A. F. Omar, A. A. Emeran, J. M. Abass: Detection of Phytoplasma Associated with Periwinkle Virescence in Egypt. In: Plant Pathology Journal. 7(1), Januar 2008, S. 92–97.